江苏省白纹伊蚊对溴氰菊酯抗性及击倒抗性突变分析

doi:10.12140/j.issn.1000-7423.2022.04.008

中国寄生虫学与寄生虫病杂志 ›› 2022, Vol. 40 ›› Issue (4): 468-474.doi: 10.12140/j.issn.1000-7423.2022.04.008

江苏省白纹伊蚊对溴氰菊酯抗性及击倒抗性突变分析

王冠熙(), 李雅姝, 李月月, 曹园园, 杨蒙蒙, 张梅花, 吴竞瑶, 梁成, 李菊林, 周华云, 唐建霞^*(), 朱国鼎

江苏省血吸虫病防治研究所、世界卫生组织消除疟疾研究与培训合作中心、国家卫生健康委员会寄生虫病预防与控制技术重点实验室、江苏寄生虫与媒介控制技术重点实验室无锡 214064

收稿日期:2021-12-27 修回日期:2022-03-15 出版日期:2022-08-30 发布日期:2022-09-07
通讯作者: 唐建霞
作者简介:王冠熙（1995-）,男,硕士研究生,从事媒介生物学研究。E-mail： 522534282@qq.com
基金资助:
国家重点研发计划(2020YFC1200105);江苏省公益类科研院所自主科研项目(BM2018020)

Resistance to deltamethrin and knockdown resistance mutation in Aedes albopictus from Jiangsu Province

WANG Guan-xi(), LI Ya-shu, LI Yue-yue, CAO Yuan-yuan, YANG Meng-meng, ZHANG Mei-hua, WU Jing-yao, LIANG Cheng, LI Ju-lin, ZHOU Hua-yun, TANG Jian-xia^*(), ZHU Guo-ding

Jiangsu Institute of Parasitic Diseases, WHO Collaborating Centre for Research and Training on Malaria Elimination, Key Laboratory of National Health Commission on Parasitic Disease Control and Prevention, Jiangsu Provincial Key Laboratory on Parasite and Vector Control Technology, Wuxi 214064, China

Received:2021-12-27 Revised:2022-03-15 Online:2022-08-30 Published:2022-09-07
Contact: TANG Jian-xia
Supported by:
National Key R&D Program of China(2020YFC1200105);Jiangsu Provincial Department of Science and Technology(BM2018020)

摘要/Abstract

摘要：

目的了解江苏省白纹伊蚊对溴氰菊酯的抗性,探究其与击倒抗性（kdr）基因突变的关联,为白纹伊蚊科学防治提供理论依据。方法用美国疾病预防与控制中心生物瓶法制备溴氰菊酯含量为1、2、4、6和8 μg/瓶的测试瓶和不含溴氰菊酯的对照瓶,每瓶放10~25只实验室培养的敏感品系白纹伊蚊,确定诊断剂量。2020年8—9月,分别从徐州市睢宁县、淮安市淮阴区和无锡市宜兴市采集白纹伊蚊的幼虫或蛹,培养至子一代（F1代）,取10~25只F1代雌蚊置含诊断剂量溴氰菊酯的测试瓶或对照瓶中充分接触30 min,计算白纹伊蚊的死亡率,评价其抗性水平。提取抗性测试后蚊虫的DNA,PCR扩增电压门控钠离子通道（VGSC）跨膜结构域Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ的基因编码区并测序,用Bioedit、Seqman等软件分析kdr基因突变情况,统计kdr基因型和突变频率,抗性表型与敏感表型蚊虫kdr突变率的差异使用χ²检验。结果用实验室敏感品系白纹伊蚊确定的溴氰菊酯诊断剂量为4 μg/瓶。从睢宁县、淮阴区和宜兴市共采集到白纹伊蚊149只。睢宁县的白纹伊蚊在诊断剂量下的校正平均死亡率为（28.2 ± 1.4）%,淮阴区和宜兴市的平均死亡率分别为（64.4 ± 5.5）%、（56.3 ± 17.7）%,3个县（市、区）的白纹伊蚊对溴氰菊酯均已产生抗药性。共获得DNA序列447条,测序结果显示,3个县（市、区）白纹伊蚊VGSC结构域Ⅳ的基因编码区1532和1534位点均存在kdr基因突变,其中1532位点共有2种等位基因,分别为野生型ATC/I（279/298,93.6%）和突变型ACC/T（19/298,6.4%）;组成3种基因型,分别为野生型纯合子I/I（133/149,89.3%）、野生型/突变型杂合子I/T（13/149,8.7%）和突变型纯合子T/T（3/149,2.0%）。1534位点共有4种等位基因,分别为野生型TTC/F（275/298,92.3%）和突变型TCC/S（5/298,1.7%）、TTA/L（14/298,4.7%）和TTG/L（4/298,1.3%）;组成4种基因型,分别为野生型纯合子F/F（128/149,85.9%）、突变型/野生型杂合子F/S（5/149,3.4%）和F/L（14/149,9.4%）,突变型纯合子L/L（2/149,1.3%）。72只有抗性表型的白纹伊蚊成蚊中,1532、1534位点野生型分别占87.5%（63/72）和86.1%（62/72）,kdr基因突变型分别占12.5%（9/72）和13.9%（10/72）;77只敏感表型白纹伊蚊成蚊中,1532和1534位点野生型分别占90.9%（70/77）和85.7%（66/77）,kdr基因突变型分别占9.2%（7/77）和14.3%（11/77）。抗性表型和敏感表型个体中,1532和1534位点kdr基因突变型间的差异无统计学意义（χ² = 0.168、4.111,P > 0.05）。结论江苏省睢宁县、淮阴区和宜兴市的白纹伊蚊对溴氰菊酯均产生抗药性,但1532和1534位点kdr基因突变频率均较低,未发现抗性表型与1532位点、1534位点kdr基因突变的相关性。

关键词: 白纹伊蚊, 溴氰菊酯, CDC生物瓶法, 抗药性, 击倒抗性突变

Abstract:

Objective To investigate the resistance of deltamethrin in Aedes albopictus in Jiangsu Province, and explore the association with knockdown resistance (kdr) mutation, to provide a theoretical basis for scientific control of Ae. albopictus. Methods The diagnostic doses were determined by preparing test bottles containing deltamethrin of 1, 2, 4, 6 or 8 μg/bottle and control bottles without deltamethrin using the CDC bottle bioassay with 10-25 susceptible laboratory-cultured Ae. albopictus in each bottle. Ae. albopictus larvae and pupae were collected from Suining County in Xuzhou City, Huaiyin District in Huai’an City, and Yixing City in Wuxi City, in Jiangsu Province during August and September 2020 and reared to the first filial generation (F1 generation). The mortality rate of Ae. albopictus was calculated by using 10-25 F1 generation female mosquitoes for exposure to a diagnostic dose of deltamethrin in the test bottle and the blank in the control bottle for 30 min to evaluate the resistance level. The DNA was extracted from the mosquitoes after bioassay, and the gene coding region of voltage-gated sodium channel (VGSC) transmembrane structural domains Ⅱ, Ⅲ and Ⅳwere amplified by PCR and sequenced. Bioedit and Seqman software were used for statistical analysis of the kdr mutations, genotypes and mutation frequency. A Chi-square test was used to compare the kdr mutation frequency in the resistant and susceptible phenotype mosquitoes. Results The diagnostic doses of deltamethrin to Ae. albopictus was 4 μg/bottle. A total of 149 Ae. albopictus were collected from Suining County, Huaiyin District and Yixing City. The corrected mean mortality rate of Suining County was (28.2 ± 1.4)%, and the mean mortality rates in Huaiyin District and Yixing City were (64.4 ± 5.5)% and (56.3 ± 17.7)%, respectively. Ae. albopictus collected from all three counties’ (cities and districts) were resistant to deltamethrin. There were 447 DNA sequences obtained, and the sequencing results showed that the kdr mutations existed in the gene coding region at codons 1532 and 1534 of the VGSC structural domain Ⅳ of Ae. albopictus in three counties (cities and districts). Two alleles at codon 1532 were wild-type ATC/I (279/298, 93.6%) and mutant ACC/T (19/298, 6.4%); three genotypes were the wild-type homozygote I/I (133/149, 89.3%), wild/mutant heterozygote I/T (13/149, 8.7%), and mutant homozygote T/T (3/149, 2.0%). Four alleles at codon 1534 were wildtype TTC/F (275/298, 92.3%), mutant TCC/S (5/298, 1.7%), mutant TTA/L (14/298, 4.7%), and mutant TTG/L (4/298, 1.3%); four genotypes were the wild-type homozygote F/F (128/149, 85.9%), wild/mutant heterozygote F/S (5/149, 3.4%), wild/mutant heterozygote F/L (14/149, 9.4%), and mutant homozygote I/I (2/149, 1.3%). Among the 72 resistant mosquitoes phenotyped, 87.5% (63/72) and 86.1% (62/72) were wild-type at codon 1532 and 1534, respectively, and 12.5% (9/72) and 13.9% (10/72) were kdr mutant, respectively. Among the 77 sensitive adults, 90.9% (70/77) and 85.7% (66/77) were wild type at codon 1532 and 1534, respectively, and 9.2% (7/77) and 14.3% (11/77) were kdr mutant, respectively. Chi-square test revealed no significant difference between kdr mutant genotypes at codon 1532 and 1534 with resistant and susceptible phenotypes Ae. albopictus( χ² = 0.168, 4.111, P > 0.05). Conclusion In Suining County, Huaiyin District and Yixing City of Jiangsu Province, Ae. albopictus mosquitoes were found resistant to deltamethrin. The frequencies of kdr mutations at codon 1532 and 1534 in Ae. albopictus was low. No significant correlation was found between the resistance phenotype and kdr mutations at codon 1532 and 1534.

Key words: Aedes albopictus, Deltamethrin, CDC bottle bioassay, Insecticide resistance, Knockdown resistance mutation

中图分类号:

R384.113

王冠熙, 李雅姝, 李月月, 曹园园, 杨蒙蒙, 张梅花, 吴竞瑶, 梁成, 李菊林, 周华云, 唐建霞, 朱国鼎. 江苏省白纹伊蚊对溴氰菊酯抗性及击倒抗性突变分析[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2022, 40(4): 468-474.

WANG Guan-xi, LI Ya-shu, LI Yue-yue, CAO Yuan-yuan, YANG Meng-meng, ZHANG Mei-hua, WU Jing-yao, LIANG Cheng, LI Ju-lin, ZHOU Hua-yun, TANG Jian-xia, ZHU Guo-ding. Resistance to deltamethrin and knockdown resistance mutation in Aedes albopictus from Jiangsu Province[J]. Chinese Journal of Parasitology and Parasitic Diseases, 2022, 40(4): 468-474.

图/表 5

表1

图1

表2

表3

表4

参考文献 33

[1]	Benelli G, Wilke ABB, Beier JC. Aedes albopictus (Asian tiger mosquito)[J]. Trends Parasitol, 2020, 36(11): 942-943. doi: 10.1016/j.pt.2020.01.001
[2]	Yang SR, Liu QY. Trend in global distribution and spread of Aedes albopictus[J]. Chin J Vector Biol Control, 2013, 24(1): 1-4. (in Chinese)
	( 杨舒然, 刘起勇. 白纹伊蚊的全球分布及扩散趋势[J]. 中国媒介生物学及控制杂志, 2013, 24(1): 1-4.)
[3]	Liu QY. Dengue fever in China: new epidemical trend, challenges and strategies for prevention and control[J]. Chin J Vector Biol Control, 2020, 31(1): 1-6. (in Chinese)
	( 刘起勇. 我国登革热流行新趋势、防控挑战及策略分析[J]. 中国媒介生物学及控制杂志, 2020, 31(1): 1-6.)
[4]	Zhang N, Wang XC, Hu JL. Epidemiological characteristics of imported dengue fever in Jiangsu province, China, 2011—2017[J]. Jiangsu J Prev Med, 2019, 30(1): 78-79. (in Chinese)
	( 张楠, 王笑辰, 胡建利. 江苏省2011—2017年输入性登革热流行病学特征[J]. 江苏预防医学, 2019, 30(1): 78-79.)
[5]	Liu XB, Wu HX, Guo YH, et al. Annual report on Aedes vector surveillance in China, 2019[J]. Chin J Vector Biol Control, 2020, 31(4): 401-406. (in Chinese)
	( 刘小波, 吴海霞, 郭玉红, 等. 2019年全国媒介伊蚊监测报告[J]. 中国媒介生物学及控制杂志, 2020, 31(4): 401-406.)
[6]	Xin Z, Zhang X, Jiang ZK. The development and prospect of vector chemical control in China over the past 70 years[J]. Chin J Hyg Insectic Equip, 2019, 25(6): 501-506. (in Chinese)
	( 辛正, 张晓, 姜志宽. 70年来我国病媒生物化学防治技术的发展历程与展望[J]. 中华卫生杀虫药械, 2019, 25(6): 501-506.)
[7]	Dang K, Doggett SL, Veera Singham G, et al. Insecticide resistance and resistance mechanisms in bed bugs, Cimex spp. (Hemiptera ∶ Cimicidae)[J]. Parasit Vectors, 2017, 10(1): 318. doi: 10.1186/s13071-017-2232-3 pmid: 28662724
[8]	Hemingway J, Ranson H. Insecticide resistance in insect vectors of human disease[J]. Annu Rev Entomol, 2000, 45: 371-391. pmid: 10761582
[9]	Kasai S, Ng LC, Lam-Phua SG, et al. First detection of a putative knockdown resistance gene in major mosquito vector, Aedes albopictus[J]. Jpn J Infect Dis, 2011, 64(3): 217-221. doi: 10.7883/yoken.64.217
[10]	Xu JB, Bonizzoni M, Zhong DB, et al. Multi-country survey revealed prevalent and novel F1534S mutation in voltage-gated sodium channel (VGSC) gene in Aedes albopictus[J]. PLoS Negl Trop Dis, 2016, 10(5): e0004696. doi: 10.1371/journal.pntd.0004696
[11]	Marcombe S, Farajollahi A, Healy SP, et al. Insecticide resistance status of United States populations of Aedes albopictus and mechanisms involved[J]. PLoS One, 2014, 9(7): e101992. doi: 10.1371/journal.pone.0101992
[12]	Kasai S, Caputo B, Tsunoda T, et al. First detection of a Vssc allele V1016G conferring a high level of insecticide resistance in Aedes albopictus collected from Europe (Italy) and Asia (Vietnam), 2016: a new emerging threat to controlling arboviral diseases[J]. Euro Surveill, 2019, 24(5): 1700847.
[13]	Zou YM, Lan CJ, Liu YH, et al. Resistance development trend of Aedes albopictus to five commonly used insecticides in Wuxi, Jiangsu Province, China, 2015—2019[J]. Chin J Vector Biol Control, 2021, 32(1): 74-77. (in Chinese)
	( 邹亚明, 兰策介, 刘蕴华, 等. 江苏省无锡市2015—2019年白纹伊蚊对5种常用卫生杀虫剂的抗药性发展趋势[J]. 中国媒介生物学及控制杂志, 2021, 32(1): 74-77.)
[14]	Liu X, Ge XW, Liu H, et al. An analysis of larval resistance of Aedes albopictus in Xuzhou city, China, 2019[J]. Jiangsu J Prev Med, 2020, 31(5): 574-575. (in Chinese)
	( 刘雪, 葛小伍, 刘慧, 等. 2019年徐州市城区白纹伊蚊幼虫抗药性分析[J]. 江苏预防医学, 2020, 31(5): 574-575.)
[15]	Cai R, Shao ZX, Fan G, et al. Investigation on insecticide resistance of Aedes albopictus from different habitats against nine insecticides in Huaian city[J]. Chin Prev Med, 2015, 16(1): 65-67. (in Chinese)
	( 蔡蓉, 邵宗贤, 范刚, 等. 淮安市不同生境白纹伊蚊对9种化学杀虫剂的抗药性研究[J]. 中国预防医学杂志, 2015, 16(1): 65-67.)
[16]	Centers for Disease Control and Prevention. CONUS manual for evaluating insecticide resistance in mosquitoes using the CDC bottle bioassay kit[DB/OL]. (2020-01-15) [2021-10-24]. .
[17]	Centers for Disease Control and Prevention. Guideline for evaluating insecticide resistance in vectors using the CDC bottle bioassay[DB/OL]. (2012-08-21) [2021-10-24].
[18]	World Health Organization. Test procedures for insecticide resistance monitoring in malaria vector mosquitoes[M]. 2nd ed. Geneva: World Health Organization, 2016.
[19]	Gao JP, Chen HM, Ma YJ. Establishment of diagnostic doses of three pyrethroid insecticides for detecting resistance in Aedes albopictus(Diptera ∶ Culicidae) in China[J]. Acta Entomol Sin, 2018, 61(1): 18-24. (in Chinese)
	( 高景鹏, 陈翰明, 马雅军. 我国白纹伊蚊对三种拟除虫菊酯类杀虫剂抗性检测诊断剂量的建立[J]. 昆虫学报, 2018, 61(1): 18-24.)
[20]	Cai R, Shao ZX, Su Q, et al. The ecology and insecticide resistance of mosquitoes in Huai’an City in 2017[J]. Chin J Hyg Insectic Equip, 2019, 25(2): 116-118. (in Chinese)
	( 蔡蓉, 邵宗贤, 苏琦, 等. 淮安市2017年蚊生态学及抗药性调查[J]. 中华卫生杀虫药械, 2019, 25(2): 116-118.)
[21]	Chen HM, Gao JP, Jiang JY, et al. Detection of the I1532 and F1534 kdr mutations and a novel mutant allele I1532T in VGSC gene in the field populations of Aedes albopictus from China[J]. Chin J Vector Biol Control, 2018, 29(2): 120-125. (in Chinese)
	( 陈翰明, 高景鹏, 姜进勇, 等. 我国白纹伊蚊现场群体击倒抗性基因I1532和F1534突变检测及I1532T突变等位基因报告[J]. 中国媒介生物学及控制杂志, 2018, 29(2): 120-125.)
[22]	Wang XH, Chen HY, Yang XY, et al. Resistance to pyrethroid insecticides and analysis of knockdown resistance(kdr) gene mutations in Aedes albopictus from Haikou City[J]. Acad J Second Mil Med Univ, 2015, 36(8): 832-838. (in Chinese)
	( 王晓花, 陈辉莹, 杨新艳, 等. 海口市白纹伊蚊对菊酯类杀虫剂的抗药性及击倒抗性基因突变分析[J]. 第二军医大学学报, 2015, 36(8): 832-838.)
[23]	Chen HY, Li KL, Wang XH, et al. First identification of kdr allele F1534S in VGSC gene and its association with resistance to pyrethroid insecticides in Aedes albopictus populations from Haikou City, Hainan Island, China[J]. Infect Dis Poverty, 2016, 5: 31. doi: 10.1186/s40249-016-0125-x
[24]	Zhou XJ, Yang C, Liu N, et al. Knockdown resistance (kdr) mutations within seventeen field populations of Aedes albopictus from Beijing China: first report of a novel V1016G mutation and evolutionary origins of kdr haplotypes[J]. Parasit Vectors, 2019, 12(1): 180. doi: 10.1186/s13071-019-3423-x
[25]	Lan XM, Xu JB, Jiang JY. An analysis of voltage-gated sodium channel gene mutation in Aedes albopictus resistant populations against pyrethroid insecticides in Ruili, Yunnan Province, China[J]. Chin J Vector Biol Control, 2019, 30(2): 158-162. (in Chinese)
	( 兰学梅, 徐家宝, 姜进勇. 云南省瑞丽市白纹伊蚊对拟除虫菊酯类杀虫剂抗性种群的电压门控钠离子通道基因突变分析[J]. 中国媒介生物学及控制杂志, 2019, 30(2): 158-162.)
[26]	Srisawat R, Komalamisra N, Eshita Y, et al. Point mutations in domain Ⅱ of the voltage-gated sodium channel gene in deltamethrin-resistant Aedes aegypti (Diptera ∶ Culicidae)[J]. Appl Entomol Zool, 2010, 45(2): 275-282. doi: 10.1303/aez.2010.275
[27]	Hirata K, Komagata O, Itokawa K, et al. A single crossing-over event in voltage-sensitive Na⁺ channel genes may cause critical failure of dengue mosquito control by insecticides[J]. PLoS Negl Trop Dis, 2014, 8(8): e3085. doi: 10.1371/journal.pntd.0003085
[28]	Williamson MS, Martinez-Torres D, Hick CA, et al. Identification of mutations in the housefly para-type sodium channel gene associated with knockdown resistance (kdr) to pyrethroid insecticides[J]. Mol Gen Genet, 1996, 252(1/2): 51-60. doi: 10.1007/BF02173204
[29]	Saavedra-Rodriguez K, Urdaneta-Marquez L, Rajatileka S, et al. A mutation in the voltage-gated sodium channel gene associated with pyrethroid resistance in Latin American Aedes aegypti[J]. Insect Mol Biol, 2007, 16(6): 785-798. pmid: 18093007
[30]	Ibrahim SS, Manu YA, Tukur Z, et al. High frequency of kdr L1014F is associated with pyrethroid resistance in Anopheles coluzzii in Sudan Savannah of northern Nigeria[J]. BMC Infect Dis, 2014, 14: 441. doi: 10.1186/1471-2334-14-441
[31]	Aïzoun N, Aïkpon R, Akogbéto M. Evidence of increasing L1014F kdr mutation frequency in Anopheles gambiae s.l. pyrethroid resistant following a nationwide distribution of LLINs by the Beninese National Malaria Control Programme[J]. Asian Pac J Trop Biomed, 2014, 4(3): 239-243. doi: 10.1016/S2221-1691(14)60238-0
[32]	Li YJ, Xu JB, Zhong DB, et al. Evidence for multiple-insecticide resistance in urban Aedes albopictus populations in Southern China[J]. Parasit Vectors, 2018, 11(1): 4. doi: 10.1186/s13071-017-2581-y
[33]	Wang Y, Yu WQ, Shi H, et al. Historical survey of the kdr mutations in the populations of Anopheles sinensis in China in 1996—2014[J]. Malar J, 2015, 14: 120. doi: 10.1186/s12936-015-0644-0

扩增片段 Amplicon	引物名称 Primer name	突变位点 Mutation site	引物序列（5′→3′） Primer sequence (5′→3′)	片段长度/bp Fragment length/bp
结构域Ⅱ Domain Ⅱ	aegSCF20	S989、I1011、L1014、V1016	gacaatgtggatcgcttccc	480
结构域Ⅱ Domain Ⅱ	aegSCR21	S989、I1011、L1014、V1016	gcaatctggcttgttaacttg	480
结构域Ⅲ Domain Ⅲ	aegSCF7	I1532、F1534	gagaactcgccgatgaactt	740
结构域Ⅲ Domain Ⅲ	aegSCR7	I1532、F1534	gacgacgaaatcgaacaggt	740
结构域Ⅳ Domain Ⅳ	albSCF6	D1763	tcgagaagtacttcgtgtcg	280
结构域Ⅳ Domain Ⅳ	albSCR8	D1763	aacagcaggatcatgctctg	280

采集地点Sampling site	死亡率/% Mortality/%				平均或校正死亡率/% Mortality/%
采集地点Sampling site	对照组Control group	实验组1 Experimental group 1	实验组2 Experimental group 2	实验组3 Experimental group 3	平均或校正死亡率/% Mortality/%
睢宁县 Suining County	9.1	35.3	35.7	33.3	28.2^a
淮阴区 Huaiyin District	0.0	70.6	60.0	62.5	64.4^b
宜兴市 Yixing City	0.0	64.0	68.8	36.0	56.3^b

采集地点 Sampling site	表型（只） Phenotype (No.)	等位基因数量（%） Number of allele（%）		基因型数量（%） Number of genotype（%）
采集地点 Sampling site	表型（只） Phenotype (No.)	野生型 ATC/I Wildtype ATC/I	突变型 ACC/T Mutant ACC/T	野生型纯合子Wildtype homozygoteI/I	野生型/突变型杂合子 Wild/mutant heterozygoteI/T	突变型纯合子 Mutant homozygote T/T
睢宁县 Suining County	抗性Resistance（32）	56（87.5）	8（12.5）	25（78.1）	6（18.8）	1（3.1）
	敏感 Susceptible （17）	26（76.5）	8（23.5）	11（64.7）	4（23.5）	2（11.8）
	小计 Subtotal（49）	82（83.7）	16（16.3）	36（73.5）	10（20.4）	3（6.1）
淮阴区 Huaiyin District	抗性Resistance（19）	37（97.4）	1（2.6）	18（94.7）	1（5.3）	0（0）
	敏感Susceptible（36）	71（98.6）	1（1.4）	35（97.2）	1（2.8）	0（0）
	小计 Subtotal（55）	108（98.2）	2（1.8）	53（96.4）	2（3.6）	0（0）
宜兴市 Yixing City	抗性Resistance（21）	41（97.6）	1（2.4）	20（95.2）	1（4.8）	0（0）
	敏感Susceptible（24）	48（100）	0（0）	24（100）	0（0）	0（0）
	小计 Subtotal（45）	89（98.9）	1（1.1）	44（97.8）	1（2.2）	0（0）
合计 Total	抗性Resistance（72）	134（93.1）	10（6.9）	63（87.5）	8（11.1）	1（1.4）
	敏感Susceptible（77）	144（94.2）	10（5.8）	70（90.9）	5（6.5）	2（2.6）
	合计 Total（149）	279（93.6）	19（6.4）	133（89.3）	13（8.7）	3（2.0）

采集地点Sampling site	表型（只） Phenotype (No.)	等位基因数量（%） Number of allele（%）				基因型数量（%） Number of genotype（%）
		野生型Wildtype	突变型 Mutant			野生型纯合子Wildtype homozygote	野生型/突变型杂合子 Wild/mutant heterozygote		突变型纯合子 Mutant homozygote
		TTC/F	TCC/S	TTA/L	TTG/L	F/F	F/S	F/L	L/L
睢宁县 Suining County	抗性Resistance（32）	56（87.5）	2（3.1）	6（9.4）	0（0）	26（81.3）	2（6.3）	2（6.3）	2（6.3）
	敏感 Susceptible（17）	24（70.6）	2（5.9）	8（23.5）	0（0）	7（41.2）	2（11.8）	8（47.1）	0（0）
	小计 Subtotal（49）	80（81.6）	4（4.1）	14（14.3）	0（0）	33（67.3）	4（8.2）	10（20.4）	2（4.1）
淮阴区 Huaiyin District	抗性Resistance（19）	35（92.1）	0（0）	0（0）	3（7.9）	16（84.2）	0（0）	3（15.8）	0（0）
	敏感 Susceptible（36）	71（98.6）	0（0）	0（0）	1（1.4）	35（97.2）	0（0）	1（2.8）	0（0）
	小计 Subtotal（55）	106（96.4）	0（0）	0（0）	4（3.6）	51（92.7）	0（0）	4（7.3）	0（0）
宜兴市 Yixing City	抗性Resistance（21）	41（97.6）	1（2.3）	0（0）	0（0）	20（95.2）	1（4.8）	0（0）	0（0）
	敏感 Susceptible（24）	48（100）	0（0）	0（0）	0（0）	24（100）	0（0）	0（0）	0（0）
	小计 Subtotal（45）	88（98.9）	1（1.1）	0（0）	0（0）	44（97.8）	1（2.2）	0（0）	0（0）
合计 Total	抗性Resistance（72）	132（91.7）	3（2.1）	6（4.2）	3（2.1）	62（86.1）	3（4.2）	5（6.9）	2（2.8）
	敏感 Susceptible（77）	143（92.9）	2（1.3）	8（5.2）	1（0.6）	66（85.7）	2（2.6）	9（11.7）	0（0）
	合计Total（149）	275（92.3）	5（1.7）	14（4.7）	4（1.3）	128（85.9）	5（3.4）	14（9.4）	2（1.3）

江苏省白纹伊蚊对溴氰菊酯抗性及击倒抗性突变分析

Resistance to deltamethrin and knockdown resistance mutation in Aedes albopictus from Jiangsu Province

RichHTML

PDF (PC)

可视化

摘要/Abstract

引用本文

使用本文

图/表 5

参考文献 33

相关文章 15

编辑推荐

Metrics

本文评价

[1]	师伟芳, 田珍灶, 周敬祝, 黄学平, 周雪梅, 吴国艳, 李琼, 廖启浪, 王丹. 2018—2020年贵州省中华按蚊抗药性调查研究[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2023, 41(1): 108-111.
[2]	贺志权, 胡亚博, 王丹, 张红卫, 刘颖, 杨成运, 钱丹, 纪鹏慧, 蒋甜甜, 鲁德领. 河南省部分地区中华按蚊对杀虫剂抗药性的监测[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2023, 41(1): 117-120.
[3]	沈瑞鑫, 王意婷, 李春晓, 吴家红, 赵彤言, 陈艳. 基于致倦库蚊转录组的溴氰菊酯抗性相关基因分析[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2020, 38(4): 453-463.
[4]	姚嘉青, 刘丛珊, 张皓冰. 寄生虫微管蛋白的研究进展[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2017, 35(2): 180-184.
[5]	夏丹，滕萍英，陈晓光，周晓红*. 白纹伊蚊滞育及其分子机制[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2016, 34(3): 18-282-289.
[6]	张逸龙，潘卫庆*. 恶性疟原虫对青蒿素产生抗性的研究进展[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2015, 33(6): 5-418-424.
[7]	姜进勇1，2，周红宁2，郑宇婷2，王剑2，杨锐2，马雅军1 * . 云南三带喙库蚊对DDT和溴氰菊酯的抗药性研究[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2015, 33(2): 9-118-121.
[8]	李星潘, 曹国梅, 邢翠翠, 华倩倩, 张亮亮, 梁韶晖. 白纹伊蚊唾液腺重组aegyptin相似蛋白alALP的制备及抗原性分析[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2014, 32(3): 6-193-197.
[9]	孙定炜，王善青*，卓开仁，曾林海，李善干. 海南省中华按蚊对3种杀虫剂的抗药性研究[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2014, 32(2): 17-127-129.
[10]	刘鉴1，程金芝1，孙宇2，朱儒芳3，张亮4，吴家红1 *. 白纹伊蚊唾液腺黏蛋白相关蛋白基因1的克隆、表达分析[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2013, 31(2): 8-120-123.
[11]	吴松泉1 *，王光丽1，雷永良2，张凯波1. 白纹伊蚊唾液三磷酸腺苷二磷酸酶在毕赤酵母中的分泌表达[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2013, 31(1): 19-73-75.
[12]	张玉勤, 刘吉起, 郭祥树, 唐振强, 赵旭东, 周瑞敏, 赵奇. 河南省淮滨县中华按蚊的抗药性研究[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2012, 30(6): 18-493-495.
[13]	刘颖，陈建设，周瑞敏，钱丹，陈清卫，许汴利，张红卫. 中华按蚊对杀虫剂敏感性调查[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2012, 30(4): 12-309-311.
[14]	蔡燕丽，郑学礼*. 白纹伊蚊AGO2和Dcr-2基因片段克隆及各发育期转录水平分析[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2012, 30(3): 10-214-217.
[15]	曾林海, 王善青, 孙定炜, 赵伟, 李善干, 杨霞. 海南省部分地区传疟媒介按蚊对4种常用杀虫剂的抗药性测定[J]. 中国寄生虫学与寄生虫病杂志, 2011, 29(3): 8-200-203.